前言。
溶 酶 体它是被细胞内膜包裹的细胞器，富含水解酶和蛋白酶，主要负责细胞内外物质的降解、吞噬和消化。 溶酶体生成机制主要分为以下三个步骤：
内吞作用：细胞通过内吞作用将细胞外或细胞内物质包裹在膜囊中，形成内体。
2.早期溶酶体的形成：内体被送到内质网，与内质网的囊泡结构（早期内体）融合，形成早期溶酶体。
3.晚期溶酶体的形成：早期溶酶体进一步转运到高尔基体，并与高尔基体上的其他膜囊（包括溶酶体）融合，形成晚期溶酶体。
在细胞内，溶酶体主要负责垃圾清理和消化功能。 同时，溶酶体还参与信号转导、免疫反应和自 噬和其他生命活动过程。 溶酶体功能异常可能导致多种疾病的发生和发展，如痛风、类风湿性关节炎、白血病等。
内吞作用和溶酶体
引文：使用石墨烯基纳米材料在癌症治疗中利用溶酶体
GNMS和基于石墨烯的DDSS进入细胞。
point
在吞噬作用在介质中，大氧化石墨烯被吞噬到吞噬体中并与溶酶体融合。
莫林介导内吞作用中、小氧化石墨烯纳米片和 GQDS 与细胞表面受体结合，并且：使内在化进入网格蛋白包被的囊泡，成熟为晚期内体并最终与溶酶体融合。
小的疏水性石墨烯片和薄片穿过质膜直接进入细胞质，并被封装在自噬体中，随后它们被自 噬在此过程中与溶酶体融合。
GQDS也可以由细胞膜洞穴介导内吞作用穿过细胞膜，这种内吞作用是通过在细胞膜中形成囊泡而发生的，囊泡可能与内体融合。
溶酶体功能实验方法。
pH 值和溶酶体质量 2 变化。
使用现有的试剂，很难判断溶酶体的数量或功能（pH值）的变化，因为只能判断单一的荧光强度。 该试剂盒包含对溶酶体高度特异性并随 pH 值表现出荧光波动的 Phlys Green 和不依赖 pH 值的 LysoPrime Deep Red。 通过结合这两种染料，可以用相同的样品测定溶酶体的pH值和量，从而可以详细分析溶酶体功能。
溶酶体酸性 pH 检测试剂盒-绿色深红色 （Cat.编号L268）。
实验实例。 使用巴弗洛霉素 A1 和 FCM 分析对溶酶体 pH 值变化进行成像
使用HELA细胞，检测溶酶体酸性抑制剂巴弗洛霉素A1（BAF.）答1）治疗期间溶酶体的量和pH值变化。LysoPrime Deep Red 的荧光几乎不受 BAF 添加的影响A1，而 Phlys Green 是 BAFA1 证实了添加溶酶体中和作用后荧光的降低。 此外，它可以通过上游模式进行检测。 因此，添加 baf虽然 A1 降低溶酶体功能，但它对溶酶体的数量没有影响。
检测条件：Phlys Green：EX = 488 nm，EM = 490 - 550 nm
LysoPrime 深红（紫色）：EX = 633 nm，EM = 640 - 700 nm
检测条件：Phlys Green（FITC滤光片）：EX=488 nm，EM=515-545 nm
lysoprime deep red (apc filter)：ex=640 nm,em=650-670 nm
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